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Archiv verlassen und diese Seite im Standarddesign anzeigen : Leere Seite im Anhang vor einer Tabelle?



AnniFranni
22-07-2013, 20:16
Hallo ihr Lieben.
Schreibe grad meine Bachelorarbeit mit Latex und komme auch bis auf manche Tabellen sehr gut klar danke Forensuche etc.
Ich habe allerdings nun in meinem Anhang ein Problem das ich auch mit Forensuche nicht ermitteln konnte:
Wenn ich das Dokument kompiliere krieg ich eine leere Seite hinter der Tabelle in der 1. Section, die da aber nicht sein sollte. Ich verwendet nicht book als class von daher kanns an der eingefügten Seite nach Chapter nicht liegen... Auch hab ich keine \section*...
Ich füge mal ein Minimalbeispiel ein... Hoffe das geht (ich bin ja noch neu hier, müsste aber funktionieren).

Hier mein Beispiel:


\documentclass[listof=totocnumbered,11pt,a4paper,ngerman]{scrartcl}

\usepackage[latin1]{inputenc}
\usepackage[T1]{fontenc}
\usepackage{lmodern}
\usepackage[ngerman]{babel}
\usepackage{moreverb}
\usepackage[font=footnotesize]{caption}
\usepackage{graphicx}
\usepackage{float}
\usepackage[a4paper,left=4cm,right=3cm,top=3cm,bottom=3cm]{geometry}
\usepackage{tabularx}
\usepackage{titletoc}
\usepackage{mathptmx}
\usepackage[version=3]{mhchem}
\usepackage{scrpage2}
\usepackage{acronym}
\usepackage{upgreek}
\usepackage{multirow}
\usepackage{color}
\usepackage{url}
\usepackage{longtable}
\usepackage{ltxtable}
\usepackage{rotating}
\usepackage[onehalfspacing]{setspace}
\titlecontents{section}[1.5em]{}{\contentslabel{1.5em}}{}{\titlerule*[0.3pc]{.}\contentspage}
\titlecontents{subsection}[4.5em]{}{\contentslabel{2.5em}}{}{\titlerule*[0.3pc]{.}\contentspage} \titlecontents{subsubsection}[7.5em]{}{\contentslabel{3.5em}}{}{\titlerule*[0.3pc]{.}\contentspage}
\titlecontents{paragraph}[10.5em]{}{\contentslabel{4.5em}}{}{\titlerule*[0.3pc]{.}\contentspage}



\begin{document}
\subsection{Verwendete Kit-Systeme}

\begin{table}[H]
\centering
\small
\setlength\extrarowheight{5pt}
\begin{tabularx}{\textwidth}{|X|X|}
\hline
\textbf{Kit-System} & \textbf{Hersteller}\\
\hline
\hline
QIAquick PCR Purification Kit & Qiagen, Hilden\\
\hline
QIAquick Gel Extraction Kit & Qiagen, Hilden\\
\hline
EasyXpress\textsuperscript{\textregistered} Linear Template Kit Plus & Qiagen, Hilden\\
\hline
EasyXpress\textsuperscript{\textregistered} Protein Synthesis Kit & Qiagen, Hilden\\
\hline
GeneArt Site directed Mutagenesis System & Invitrogen, Carlsbad (USA)\\
\hline
DiviTum\textsuperscript{\texttrademark}-Kit & Biovica International AB, Uppsala (Schweden)\\
\hline
\end{tabularx}
\caption{Verwendete Kit-Systeme mit Herstellerangabe}
\end{table}

\subsection{Verwendete Medien und Lösungen}

\begin{table}[H]
\centering
\small
\setlength\extrarowheight{5pt}
\begin{tabularx}{\textwidth}{|X|X|p{0.5cm} X|}
\hline
\textbf{Verwendung} & \textbf{Medium oder Lösung} & \multicolumn{2}{X|}{\textbf{Zusammensetzung}}\\
\hline
\hline
Kultivierung von \newline \textit{Escherichia coli} & LB-Medium & 12,5 & g LB broth, Miller\\
& & \multicolumn{2}{X|}{auf 500 mL mit A. bidest auffüllen und autoklavieren}\\
\cline{2-4}
& LB-Agarplatten mit Ampicillin & 12,5
\newline
5,0
& g LB broth, Miller
\newline g Agar Agar\\
& & \multicolumn{2}{X|}{auf 500 mL mit A. bidest auffüllen und autoklavieren}\\
\cline{2-4}
& LB-Medium mit Ampicillin & \multicolumn{2}{X|}{LB-Medium wie beschrieben mit 1:1000 Ampicillin}\\
\cline{2-4}
& Ampicillin-Stammlösung & 100 & mg/mL Ampicillin in A. bidest\\
\hline
Transformation von \newline DH5$ \upalpha $\textsuperscript{\texttrademark}-T1\textsuperscript{\textregistered}-\textit{Escherichia coli}-Zellen & SOC-Medium & 0,5
\newline 2,0
\newline 2,5
\newline 10
\newline 10
\newline 10
\newline 20
& \% Hefextrakt
\newline \% Trypton
\newline mM KCl
\newline mM MgCl$_2$
\newline mM MgSO$_4$
\newline mM NaCl
\newline mM Glukose\\
\hline
SDS-PAGE & Polyacrylamid-Stammlösung & 30
\newline 0,8
& \% Acrylamid
\newline \% Methylenbisacrylamid\\
\cline{2-4}
& Trenngel-Puffer & 0,4
\newline 1,5
& \%SDS
\newline M Tris-Cl \newline (pH-Wert $=$ 8,8)\\
\cline{2-4}
& Sammelgel-Puffer & 0,4
\newline 0,5
& \% SDS
\newline M Tris-Cl \newline (pH-Wert $=$ 6,8)\\
\cline{2-4}
& 10fach Elektrophorese-Puffer & 1,92
\newline 1
\newline 0,25
& M Glycin
\newline \% SDS
\newline M Tris-Cl \newline (pH-Wert $=$ 8,3)\\
\cline{2-4}
& 10\% APS-Stammlösung & 1
\newline 10
& g APS
\newline mL A. bidest\\
\cline{2-4}
&10\% SDS-Stammlösung & 10
\newline 100
& g SDS
\newline mL A. bidest\\
\cline{2-4}
& TEMED-Stammlösung & & \\
\cline{2-4}
& 5facher Proteinladepuffer & 0,313
\newline
\newline 10
\newline 0,05
\newline 50
& M Tris-Cl \newline (pH-Wert $=$ 6,8)
\newline \% SDS
\newline \% Bromphenolblau
\newline \% Glycerol \\
\cline{2-4}
& 20fache Reduzierungsreagenz & 2 & M Dithiothreitol\\
\hline
\end{tabularx}
\caption[Verwendete Medien und Lösungen]{Verwendete Medien und Lösungen mit Angabe des Verwendungszweckes und der Zusammensetzung \label{medien}}
\end{table}

\begin{table}[H]
\centering
\small
\setlength\extrarowheight{5pt}
\begin{tabularx}{\textwidth}{|X|X|p{0.5cm} X|}
\hline
\textbf{Verwendung} & \textbf{Medium oder Lösung} & \multicolumn{2}{X|}{\textbf{Zusammensetzung}}\\
\hline
\hline
Western-Blot & Blockierungslösung & 25
\newline 192
\newline 20
& mM Tris
\newline mM Glycin
\newline \% Methanol\\
\cline{2-4}
& TBS-Lösung & 10
\newline
\newline 150
& mM Tris-Cl \newline (pH $=$ 8,0)
\newline mM NaCl\\
\cline{2-4}
&TBST-Lösung & 10
\newline 150
\newline
\newline 250
& mM Tris-Cl \newline (pH $=$ 8,0)
\newline mM NaCl
\newline $ľ$L Tween 20\\
\hline
Gelelektrophorese & 5facher TBE-Puffer & 445
\newline 445
\newline 10
& mM Tris-Base
\newline mM Borsäure
\newline mM EDTA \newline (pH-Wert $=$ 8,0)\\
\cline{2-4}
& 1facher TBE-Puffer & 100
\newline 400
& 5facher TBE-Puffer
\newline A. bidest\\
\cline{2-4}
& Probenladepuffer & 50
\newline 28
\newline
\newline 13,76
& mg Bromphenolblau
\newline mL 10 mM EDTA-Lösung (pH-Wert $=$ 8,0)
\newline mL 87 \% Glycerin\\
\cline{2-4}
& 10 mM EDTA-Lösung & 0,371
\newline 100
\newline 1
& g EDTA in
\newline mL A.bidest gelöst
\newline M NaOH zum pH-Wert einstellen nutzen\\
\cline{2-4}
& TE-Puffer & 10
\newline 1
& mM Tris-HCl
\newline mM EDTA
\newline in A.bidest lösen\\
\hline
Plasmid-Mini-Präparation & Lösung I & 50
\newline
\newline 50
\newline 10
\newline 1
& ml 25 mM Tris/HCl (pH $=$ 7,5)
\newline mM Glucose
\newline mM EDTA
\newline $\upmu$L RNase\\
\cline{2-4}
& Lösung II & 0,2
\newline 1
& M NaOH
\newline \% SDS \\
\cline{2-4}
& Lösung III & 60
\newline
\newline 11,5
\newline 28,5
& mL 5 M Kaliumacetatlösung
\newline mL Eisessig
\newline mL A.bidest \\
\hline

\end{tabularx}
\caption[Fortsetzung Verwendete Medien und Lösungen]{Fortsetzung Verwendete Medien und Lösungen mit Angabe des Verwendungszweckes und der Zusammensetzung}
\end{table}

\end{document}



Ich wäre sehr sehr dankbar für eure Hilfe!

LG,

AnniFranni

nixversteh
22-07-2013, 23:02
Hallo Anni,

willkommen im Forum. Wenn du ds *H* in der zweiten Tabelle durch ein *h* ersetzt, läuft es durch ohne leere Seite.

\begin{table}[h]

Ich glaube das *H* dient dazu die Tabelle genau HIER anzulegen, was vielleicht bei Tabelle zwei nicht klappt, deshalb eine leere Seite. Ist geraten, da ich es nicht weiß.

Viel Erfolg

Gruß

Martin

LuPi
23-07-2013, 07:32
Noch eine kleine Ergänzung: Offensichtlich willst Du die Tabellen nicht
gleiten lassen. Dann nimm auch keine Gleitumgebung (table). Wegen der
jetzt zwangsläufig auftauchenden Frage schau Dir mal capt-of (http://www.golatex.de/wiki/%5Ccaptionof) an.

AnniFranni
26-07-2013, 17:47
Hallo,

vielen Dank Martin, mit dem kleinen h hatte ich es auch versucht aber dann festgestellt dass er mir die zwei Tabellen vertauscht irgendwie, da ich noch weitere habe die folgen und das alles mit den Überschriften etc nicht hinhaut, trotzdem vielen Dank!

LuPi, vielen lieben Dank für den Tipp ohne Gleitumgebung. Ich habe tatsächlich die Gleitumgebungen benutzt, weil ich das caption paket nutzen wollte damit mir die Tabellenbezeichnungen direkt ins Tabellenverzeichnis übernommen werden. Wenn ich also das Capt-of Paket nutze, trägt er mir das auch direkt mit ins Tabellenverzeichnis ein und erzeugt auch eine fortlaufende Nummer der Tabellen?

LG Anni

esdd
26-07-2013, 18:27
Hallo,
die zweite Tabelle ist ein klein wenig zu lang, deshalb versucht es Latex auf der nächsten Seite. Wenn ich die extrarowheight bei der Tabelle nur auf 4.5pt setze, dann entsteht bei mir keine Leerseite mehr.

Unabhängig davon hat LuPi recht, dass man Objekte, die nicht gleiten sollen, auch nicht in Gleitumgebungen setzen braucht.
Gruß
Elke

LuPi
29-07-2013, 07:43
Wenn ich also das Capt-of Paket nutze, trägt er mir das auch direkt mit ins Tabellenverzeichnis ein und erzeugt auch eine fortlaufende Nummer der Tabellen?


Yepp, so soll es sein.

klops
29-07-2013, 07:51
Gleitende Tabellen können durchaus hinter nicht gleitende Tabellen verschoben werden, wobei die Nummerierung nicht angepasst wird. Das ist ein bekannter Nachteil, wenn man gleitende und nicht gleitende Tabellen mischt. Um das zu verhindern kann man mit \clearpage oder \FloatBarrier (siehe Paket placeins (http://www.ctan.org/pkg/placeins)) arbeiten.